首頁 > 科研技術(shù)平臺 > 病理檢測 > 透射/掃描電鏡
透射電鏡概念:透射電鏡(Transmission Electron Microscope,TEM),全稱透射電子顯微鏡,是把經(jīng)加速和聚集的電子束投射到超薄切片的樣品上(通常70-90nm),電子與樣品中的原子碰撞而改變方向,從而產(chǎn)生立體角散射。散射角的大小與樣品的密度、厚度相關(guān),因此可以形成明暗不同的影像,影像將在放大、聚焦后在成像器件上顯示出來。是一種高分辨率(0.1nm-0.2nm)、高放大倍數(shù)(0.2K-600K)的顯微鏡。能夠清楚的觀察到在普通光學顯微鏡下無法看清的動植物細胞內(nèi)的超微結(jié)構(gòu),比如線粒體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、高爾基體、溶酶體、自噬小體、凋亡小體、葉綠體、液泡、細胞內(nèi)細菌或病毒侵染等結(jié)構(gòu)及病理變化。透射電鏡超薄切片除了能夠顯示細胞內(nèi)的超微結(jié)構(gòu)之外,還可用于觀察病原微生物,如各類細菌真菌等。
掃描電鏡概念:掃描電鏡(?SEM)?是一種利用電子束掃描樣品表面并收集樣品發(fā)出的物理信號來獲取表面形貌信息的顯微技術(shù)。掃描電鏡的高分辨率和深度信息使其成為一種重要的研究工具,?能夠提供關(guān)于樣品表面的詳細信息,?對于理解和分析材料的性質(zhì)、?生物樣本的微觀結(jié)構(gòu)以及地質(zhì)樣本的礦物組成等方面具有不可替代的作用。
1、三維形貌的觀察和分析。
2、觀察形貌的同時,進行微區(qū)的成分分析。
透射電鏡取材注意事項
樣品的取材與固定是生物電鏡技術(shù)中最關(guān)鍵的一步,樣品的質(zhì)量直接決定了電鏡數(shù)據(jù)的質(zhì)量。取材導致的結(jié)構(gòu)差,后期實驗中無法補救。對取材的基本要求是:確保樣品盡可能接近自然生活狀態(tài),同時確保位置準確。不同的樣品,取材細節(jié)上有較大區(qū)別,有任何疑問,歡迎咨詢聯(lián)系相關(guān)技術(shù)人員!
需要的器材:2.5%電鏡專用戊二醛、PBS或生理鹽水、鋒利的手術(shù)刀、鑷子、牙簽、吸管、封口膜、細胞刮、離心機、切割板(光盤或塑料盤)、0℃碎冰(不要冰袋)、1.5ml尖頭ep管、鉛筆、記號筆。
一、動物組織取材流程及要求
取材流程:(1-3min之內(nèi)取材完畢)
1、試劑、容器、器械4℃預冷,取材冰上操作(0℃碎冰,不要凍存的冰袋,無條件可室溫)。提前滴一些2.5%戊二醛在切割板上;
2、動物麻醉/處死,快速打開需要取材的位置。趁血液還在流動時,迅速切取一塊組織,生理鹽水或PBS快速沖洗后浸泡到切割板上的戊二醛中進一步切割;
有方向性的樣品:如肌絲、脊髓、腸道、血管等,沿著組織伸展方向切成1mm*1mm*3mm的長條,以便分辨方向。
薄片狀樣品:如視網(wǎng)膜、粘膜等可以切的大一些3mm*3mm左右。
無方向性的樣品:選擇位置準確的部位切成1mm3小塊,切記寧缺毋濫,保證取的每一塊都是準確的。如:觀察腎小球取腎皮質(zhì),觀察肺泡避開氣管取肺葉。
有被膜的樣品:去除被膜或者將被膜破孔方便滲透。樣品大小盡量接近,不規(guī)則或稍大一點沒關(guān)系。一定要避免修整樣品時造成邊緣組織機械損傷,這樣反而效果不好。
3、切的時候避免刀片對樣品的擠壓,應(yīng)該拉刀法(斜著前后拉動手術(shù)刀)切斷,切樣時,配合牙簽輕輕撥動樣品,將樣品切成符合要求的形狀。疏松多孔及柔軟的樣品可以大一些,避免樣品溶解或壓壞。最后將樣品用沾水的牙簽粘入1.5ml尖頭EP管。不要用鑷子夾樣品。加滿2.5%戊二醛。4℃避光保存。如果樣品漂浮,可用紙或紗布將組織壓到液面以下。
4、取好的樣品封口膜封口,氣泡膜包裹厚一點再郵寄。樣品不要和冰袋直接接觸,防凍傷。
注意事項:
1、組間位置一致。同一器官不同部位的同種細胞,結(jié)構(gòu)也有較大差異;
2、器具鋒利,柔軟的組織要用手術(shù)刀輕輕拉斷,盡量避免壓斷,保證切面鋒利。
3、冰上操作時,用制冰機的碎冰,如果沒有碎冰,可以室溫取材,冰袋易凍傷樣品。
4、取材速度,條件是靈活的,把握整體原理,不要刻意為了保證位置或大小,切壞了樣品。尤其是要避免樣品擠壓以及冰袋凍壞樣品。
關(guān)于灌注取材:
灌注取材要求較高,盡量不要灌注。因為灌注不充分,反而會導致超微結(jié)構(gòu)較差。較大且較深,不好定位的組織,可以選擇灌注。要求如下:
1、灌注液建議:終濃度為4%多聚甲醛+1%戊二醛混合液,稀釋液為PB(配方參考附件);
2、多聚甲醛和戊二醛均為電鏡專用,多聚甲醛建議新鮮配置7天以內(nèi)的;
3、灌注方式以機械泵輔助灌注,盡量灌注充分。灌注不充分會導致部分區(qū)域結(jié)構(gòu)差。
4、灌注完成之后,按上述要求電鏡取材,樣品固定在2.5%戊二醛中,4度郵寄給我們。較大且較深的組織,振動切片成150-200um的厚片固定,方便后續(xù)操作。
二、細胞細菌取材流程及要求
貼壁細胞取材流程:細胞取材有2種方法,分別為刮取法和消化法。均有各自的優(yōu)缺點,請根據(jù)情況酌情取材。
取材方法 | 優(yōu)點 | 缺點 |
刮取法(推薦) | 1、保持了細胞最原始結(jié)構(gòu);2、細胞損傷較小,最大程度還原了樣品真實結(jié)構(gòu),實驗室會挑選完整細胞拍攝; | 1、細胞切面多呈長條形或梭形;2、胞漿視野會稍窄一些; |
消化法 | 細胞呈飽滿圓形,胞漿視野廣 | 1、細胞會有損傷,線粒體空泡化嚴重、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)擴張、自噬假陽性等;2、細胞間結(jié)構(gòu)破壞。無法觀察細胞間結(jié)構(gòu)。如:緊密連接。 |
刮取法操作流程:
1、請用6cm-10cm的培養(yǎng)皿培養(yǎng)細胞,方便后續(xù)操作;
2、細胞倒掉培養(yǎng)液,加入恢復至室溫的戊二醛固定液2ml。
3、細胞常溫避光固定5min后,用細胞刮刀斜45°朝一個方向快速鏟下,保持一個方向,不要來回刮;
1、得到的細胞懸液吸入離心管,離心(1500-3000rpm)3-5min,棄上清,然后加入新的電鏡固定液。再次更換固定液后,室溫避光固定30min后,4℃保存。細胞團塊需要有綠豆大小,如圖所示。太大的團塊建議吹散重懸。
5、取好的樣品封口膜封口,氣泡膜包裹厚一點再郵寄。樣品不要和冰袋直接接觸,防凍傷。
消化法特點操作流程:
1、培養(yǎng)好的細胞(細胞密度不超過70%)棄培養(yǎng)基,加入胰酶消化。
2、胰酶消化好后(時間不宜過長),加培養(yǎng)基終止消化,吸管輕輕吹打至細胞起浮。吸入離心管,低速離心(1500-3000rpm),3-5min左右,細胞團要有綠豆大小,如圖所示。
3、棄上清,加入電鏡固定液(室溫),細胞量多需要吹散,少量細胞無需吹散。
4、室溫避光固定30min,再轉(zhuǎn)移至4°保存運輸。
5、取好的樣品封口膜封口,氣泡膜包裹厚一點再郵寄。樣品不要和冰袋直接接觸,防凍傷。
懸浮細胞取材流程:
細胞懸液離心(1500-3000rpm)3-5min,棄掉培養(yǎng)基后加入2.5%戊二醛室溫避光固定30min,再轉(zhuǎn)入4℃保存,4℃冰袋運輸。細胞團塊需要有綠豆大小,如圖所示。太大的團塊可用牙簽挑成幾塊。取好的樣品封口膜封口,氣泡膜包裹厚一點再郵寄。樣品不要和冰袋直接接觸,防凍傷。
細菌取材流程:
1、固定培養(yǎng)的細菌:牙簽挑取菌落置于室溫2.5%戊二醛,避光固定30min。再轉(zhuǎn)入4℃保存,4℃冰袋運輸。樣品包裹厚一點,不要和冰袋直接接觸,以免凍傷。細胞團塊需要有綠豆大小,如圖所示。太大的團塊可用牙簽挑成幾塊。
2、懸浮細菌:細菌懸液離心(5000-10000rpm)3-5min,棄掉培養(yǎng)基后加入2.5%戊二醛室溫避光固定30min,再轉(zhuǎn)入4℃保存。細胞團塊需要有綠豆大小,如圖所示。4℃冰袋運輸。取好的樣品封口膜封口,氣泡膜包裹厚一點再郵寄。樣品不要和冰袋直接接觸,防凍傷。
注意事項:
1、不要反復來回刮細胞,會造成細胞大量損傷;
2、離心的目的是讓細胞聚集成團,轉(zhuǎn)速不可太高,會導致細胞變形;
3、樣品保存郵寄時,避免凍傷。
三、外泌體、噬菌體、病毒、脂質(zhì)體等:
1、建議提供濃縮液至少50ul,樣品的純度及濃度盡量高。
2、保存及運輸方式以樣品結(jié)構(gòu)性狀穩(wěn)定為要點。如:凍存的外泌體及病毒,不好反復凍融,所以建議干冰郵寄。新鮮提取的外泌體及噬菌體等,4℃可存放3-5天,所以樣品可冰袋郵寄。部分樣品可能在常溫更能穩(wěn)定保存其形態(tài),即可常溫郵寄。
3、取好的樣品封口膜封口,氣泡膜包裹厚一點再郵寄。
四、植物組織取材及要求
取材流程:
1、PBS沖洗樣品表面,去除泥沙等污染物。
2、用鋒利的手術(shù)刀或剪刀切割樣品,切樣時,可配合牙簽輕輕撥動樣品,將樣品切成符合要求的形狀,有方向的樣品:如根尖、莖等,沿著組織伸展方向切成1mm*1mm*3mm的長條,以便分辨方向。薄片狀樣品可以切的大一些3mm*3mm左右。沒有方向的樣品切成1mm3小塊,切記寧缺毋濫,保證取的每一塊都是準確的,如觀察果皮就要去除果肉。觀察果肉就要去除果皮。觀察葉片就需要避開葉脈。有膜殼的樣品要去除膜殼或者將膜殼破孔方便滲透;
2、注意切割邊緣整齊,去除機械損傷的位置。
3、最后將樣品用沾水的牙簽沾入1.5ml尖頭EP管。加滿2.5%戊二醛。4℃避光保存。不要用鑷子夾樣品。如果樣品漂浮,可用紙或紗布將組織壓到液面以下。如果需要抽氣,注意抽氣的程度,太強烈可能會導致結(jié)構(gòu)變化。
4、取好的樣品封口膜封口,氣泡膜包裹厚一點再郵寄。樣品不要和冰袋直接接觸,防凍傷。
注意事項:
1、組間位置一致。同一器官不同部位的同種細胞,結(jié)構(gòu)也有較大差異;
2、樣品大小盡量接近,不規(guī)則或稍大一點沒關(guān)系。
3、器具鋒利,柔軟的組織要用手術(shù)刀輕輕拉斷,盡量避免壓斷,保證切面鋒利。一定要避免修整樣品時造成邊緣組織機械損傷,這樣反而效果不好。
4、冰上操作時,用制冰機的碎冰,如果沒有碎冰,可以室溫取材,冰袋易凍傷樣品。
5、取材速度,條件是靈活的,把握整體原理,不要刻意為了保證位置或大小,切壞了樣品。尤其是樣品擠壓以及冰袋凍壞樣品。
五、樣本儲存運輸標準
儲存:樣本取材后,4℃避光保存時間最好不超過1個月。
運輸:固定液充滿EP管,封口膜封口。如下圖,氣泡膜或報紙包裹7-8層。紙質(zhì)送樣單+泡沫盒+冰袋的方式運輸,冰袋2-3個(-20℃冰袋,不要太多,夏季3-4個),順豐寄付。
附件:戊二醛配方
1、0.2M 磷酸緩沖液配方:
A液:0.2mol/L磷酸二氫鈉水溶液:
NaH2PO4.H2O27.6g 或 NaH2PO4.2H2O 31.21g加雙蒸水到1000ml
B液:0.2mol/L磷酸氫二鈉水溶液:
Na2HPO4.2H2O 35.61g 或 Na2HPO4.12H2O 71.64g加雙蒸水到1000ml
A液23ml+B液77ml混合得到0.2M磷酸緩沖液。
2、2.5﹪戊二醛固定液配方:
0.2M磷酸緩沖液50ml+25﹪戊二醛(電鏡專用)10ml+雙蒸水,定容至100ml
調(diào)整pH 值 7.3-7.4
六、結(jié)果示例:
掃描電鏡取材注意事項
一、細胞爬片、蓋玻片等培養(yǎng)的細胞樣品:
推薦用六孔板或培養(yǎng)皿培養(yǎng)細胞爬片樣品,棄掉培養(yǎng)基, PBS 快速洗 2 遍, 棄掉 PBS,加入2.5%電鏡專用戊二醛固定液固定。固定液可以多加一些, 樣品需要完全浸沒在固定液里, 4 ℃固定 12h 以上。加滿2.5%戊二醛固定液, 樣品封口膜封口, 氣泡膜包裹, 然后泡沫盒+ 冰袋快遞運輸。
二、固體培養(yǎng)基培養(yǎng)的細菌樣品:
已經(jīng)長成菌落的細菌樣品,直接用棉簽或者牙簽挑起米粒大小菌落,轉(zhuǎn)入 2.5%戊二醛固定液中, 1.5ml的ep 管,固定液加滿,4 ℃固定 12h 以上。泡沫盒+冰袋快遞運輸。
三、懸浮細胞、菌液、藻液等樣品:
樣品離心, 棄上清, PBS 洗 2 次,棄 PBS,加入 2.5%戊二醛固定液,轉(zhuǎn)入1.5m的ep 管, 加滿2.5%戊二醛固定液,樣品封口膜封口, 氣泡膜包裹, 4 ℃固定 12h 以上,泡沫盒+冰袋快 遞運輸。對于細菌樣品, 如果需要觀測鞭毛, 請盡量讓細菌自然沉淀, 去除上清時盡量操作輕柔,離心會使鞭毛脫落。
四、動植物植物組織樣品:
動物組織: 動物麻醉, 處死,快速切取需要觀察的組織部位, 生理鹽水沖洗血液,用鋒利的剪刀或手術(shù)刀暴露出需要觀察的面。管狀組織切成0.5cm長度的小段,其他無方向性的組織切成0.5cm*0.5cm*0.5cm左右的小塊。請注意切取的小塊必須包含待測結(jié)構(gòu)且方便辨認, 特別是對于有方向性的樣品,注意區(qū)分方向。取材后于2.5%戊二醛4℃固定保存12h以上, 郵寄時固定液加滿, 樣品封口膜封口,氣泡膜包裹,泡沫盒+冰袋快遞運輸。
植物組織: 植物樣品用PBS或者蒸餾水沖洗,去除表面環(huán)境雜質(zhì),然后用鋒利的手術(shù)刀或剪刀切取需要觀察的部位, 葉片切成: 0.5cm*0.5cm大小,根切取0.5cm左右長度的小段。其他果實或組織0.5cm*0.5cm*0.5cm左右。請注意切取的小塊必須包含待測結(jié)構(gòu)且方便辨認, 特別是對于有方向性的樣品,注意區(qū)分方向。取材后于2.5%戊二醛4℃保存,如果樣品漂浮, 需要用真空泵反復抽沉, 或者用棉花或紗布將樣品壓到液面以下。 4℃保存12h以上。對于郵寄時固定液加滿, 樣品封口膜封口,氣泡膜包裹,泡沫盒+冰袋快遞運輸。
五、干燥樣品:
對于干燥的種子、材料等樣品, 可直接郵寄, 無需固定。
樣品保存及郵寄:
1、儲存:樣本取材后,4℃保存時間盡量不超過1個月。
2、運輸:固定液充滿EP管,封口膜封口,氣泡膜或報紙包裹厚一些。最后泡沫盒+冰袋的方式運輸, 冰袋2-3個(-20℃冰袋,不要太多) ,一定要與樣品隔開。特殊樣品如脂肪、 植物等,用紗布將樣品壓到液面以下,保證充分固定。
掃描電鏡結(jié)果示例:
科研服務(wù)咨詢
公眾號二維碼